PHENOLOGICAL CYCLE AND MOLECULAR MARKERS CLASSIFICATION OF RED KWAO KRUA (BUTEA SUPERBA ROXB.)
Keywords:
Red Kwao Krua, phenological cycle, clones, RAPD, dendrogram, genetic relatednessAbstract
Red Kwao Krua phenological cycle was examined every 15 days at Wangnumkeaw district, Nakhon Ratchasima from mid March 2004 to mid March 2005. Ten plants were selected to collect data. New stems and new leaves were flushed (100%) in early June. The changing in 1 unit of maximum temperature and rainfall from 32.93°C and 0 mm/day caused the changed in new stems and new leaves appearance by 9.98% and 12.52% respectively. Old leaves reached 100% in late September. Falling leaves reached 100% in early November. The changing in 1 unit of minimum temperature and relative humidity from 20.62°C and 89.87% caused the changed in leaves falling 22.40% and 5.49% respectively. Red Kwao Krua flowered 100% in late February. The changing in 1 unit of maximum-minimum temperature and relative humidity from 31.91°C, 19.02°C, and 79.13% caused the changed in flowering 10.36%, 8.94%, and 3.83% respectively. Podding reached 100% in mid March. The changing in 1 unit of maximum temperature from 30.94°C caused the changed in podding 8.31%. Using RAPD technique with 27 clones from Nakhon Ratchasima, Kalasin and Sakonnakhon with 40 primers, 693 positions were detected. The dendrogram showed 75 - 97% genetic relatedness among clones. Which fell in to five groups. These groups were in line with their sources. Botanical characteristics were related to seven DNA pair but could not be used to classify the differences among clones.
References
ชรินทร์ วังใจ และ ยุทธนา สมิตะสิริ. (2530). ชีววิทยาบางประการของกวาวขาว: 5) การเจริญของกวาวขาวในธรรมชาติ. ใน: เอกสารประชุมวิชาการวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทยครั้งที่ 13. มหาวิทยาลัยสงขลานครินทร์, สงขลา, หน้า 476-477.
ประสาร ตลาดคิด. (2546). อิทธิพลของสภาพแวดล้อมและปัจจัยที่มีผลต่อการเจริญเติบโต การออกดอก การติดฝักและมูลค่าและการสะสมสาร Daidzein และ Genistein ในหัวกวาวเครือขาว (Pueraria candollei Grah. Var. mirifica (Airy Shaw et Suvatabandhu) Niyomdham). วิทยานิพนธ์ระดับปริญญาเอก, สาขาวิชาเทคโนโลยีการผลิตพืช สำนักวิชาเทคโนโลยีการเกษตร มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีสุรนารี, 83 หน้า.
พรพันธ์ ภู่พร้อมพันธ์. (2538). เทคนิคการจำแนกพันธุ์พืชด้วยวิธี Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) ในการตรวจแยกสายพันธุ์พืชด้วยการใช้ Isozyme pattern และ RAPD. เอกสารประกอบการฝึกอบรมทางวิชาการระหว่างวันที่ 24-28 กรกฎาคม 2538. ศูนย์ปฏิบัติการและเรือนปลูกพืชทดลอง. มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์ (วิทยาเขตกำแพงแสน), นครปฐม.
Ditchaiwong, C., Sakuanrungsirikul, S., Samitasiri, Y., Wongyai, S., Srijugawan, S., and Suwanbury, S. (2005). Clonal selection of Pueraria mirifica Airy Shaw and Suvatabandhu by using molecular markers. Agricultural Sci. J., 36S-6(Suppl): 36(5–6):919-922.
Gates, C.T. (1955). The response of the young tomato plant to a brief period of water shortage. II: The individual leaves. Aust. J. Biol. Sci., 8:215-230.
Li, M., and Midmore, D.J. (1999). Estimating the genetic relationships of Chinese water chestnut (E. dulcis (Burm.f.) Hensch) cultivated in Australia, using RAPDs. J. of Hort. and Biotec., 74(2):224-231.
Manakasem, Y. (1995). Changes in apices and effect of microclimate on flora initiation of mangosteen (Garcinia mangostana L.) Sursnaree J. Sci. Technol., 2(1):15-20.
Manakasem, Y. (1995). Changes in apices and effect of microclimate on flora initiation of rambutan (Nephelium lappaceum L.) Sursnaree J. Sci. Technol., 2(2):81-87.
Nobel, P.S. (1988). Environmental Biology of Agaves an Cacti. Cambridge: Cambridge University Press. NY, 270p.
Satoh, M. (1982). Effect of leaves retained at the tissue of harvest on regrowth and changes in their physiological activity in mulberry tree. JARQ., 15:266-271.
Stetter, K.O., Fiala, G., Huber, G., Huber. R., and Segerer, A. (1990). Hyperthermophillic Microorganisms. FEMS microbiol Rev., 75(38):117-124.
